学部前期課程
学内のオンライン授業の情報漏洩防止のため，URLやアカウント、教室の記載は削除しております。
最終更新日：2026年10月16日
授業計画や教室は変更となる可能性があるため、必ずUTASで最新の情報を確認して下さい。
UTASにアクセスできない方は、担当教員または部局教務へお問い合わせ下さい。
最終更新日：2026年10月16日
授業計画や教室は変更となる可能性があるため、必ずUTASで最新の情報を確認して下さい。
UTASにアクセスできない方は、担当教員または部局教務へお問い合わせ下さい。
全学体験ゼミナール (🧬🐟🌳🐝 身近な生命科学実習 ／ Molecular Biology in our daily lives)
🧬🐟🌳🐝 身近な生命科学実習 ／ Molecular Biology in our daily lives
【注意】この授業は開講日程の都合上、成績が所定の確認日より後に公開される見込みが高いので留意すること。特に2年生は本科目の成績が前期課程修了要件に含まれない見込が高いので、履修にあたっては十分に注意すること。
＊対面授業に参加可能な学生のみに履修を制限
＊実験三昧・研究室体験
＊少人数制・自分のペースで
＊生命科学分子生物学実験入門編
＊体験を通じた"考えるトレーニング"
【到達目標】
1. DNA抽出・PCR・電気泳動・シーケンス解析といった分子生物学の基礎技術を、手を動かして一通り実施できる
2. 実験ノートに観察と手順を正確に記録し、自分の結果を根拠に考察・説明できる
3. 答えの定まっていない課題に対して、自分で実験をデザインし、試行錯誤しながら取り組める
4. うまくいかない結果（失敗）から原因を考え、次の一手を組み立てられる
━━━━━━━━━━━
分子生物学の入門編にあたる実験体験を、実質6日間の集中講義で行います。文理を問わない少人数制で、個別最適なプログラムを目指します。実習は2つのパートに分かれます。前半Aパートは、共通課題「マグロ属の魚種判別実験」で基礎スキルと考え方を習得します。後半Bパートは、その内容を活かして自由課題に取り組みます。最終日はラボミーティング形式で発表します。
━━━━━━━━━━━
Aパート｜基礎的な実験スキルと考え方の習得
┄┄┄┄┄┄┄┄┄┄┄
マグロの切り身は、味や形状から種別を見分けるのが難しい。魚の専門家でなければ、なおさらです。では、どうすれば誰でも正確に再現性をもって判別できるのか。本実習では、分子生物学的手法でマグロ属の種別判別を体験します。ねらいは2つ。1つは基礎的な実験スキルと考察方法の習得。もう1つは、ニュースでよく耳にするDNAやPCRといった生命科学の用語・技術の理解です。
【実習の流れ】
① 本実習内容の説明
② マグロからDNA抽出
③ 遺伝子増幅法（PCR法）によるDNAの増幅とDNA配列特異的切断酵素による切断
④ DNA断片を電気泳動により分離して検出
⑤ 得られたDNAのパターンからマグロの種別判別
⑥ サンガーシーケンス解析によるマグロの種別判別
⑦ 結果に関する発表およびディスカッション
━━━━━━━━━━━
Bパート｜自由課題を通じた"考えるトレーニング"
┄┄┄┄┄┄┄┄┄┄┄
上記の作業に加え、各自の進度に応じたシンプルな課題を個人／グループに随時与えます。Web検索・過去のプリント・生成AIを使っても、答えは簡単には見つかりません。実験を自らデザインして検討する必要もあります。この"考えるトレーニング"で、答えの定まらない課題に挑戦する体験を、楽しみながら味わってください。
━━━━━━━━━━━
【ガイダンス】
対面でのガイダンスは行いません。下記の録画ガイダンスを必ず視聴し、履修を検討してください。履修希望者はフォームを送信すること（定員に達し次第、募集締切）。フォームURLはガイダンスの欄を参照。個別対応が必要な場合は、メールでご連絡ください。
【実習実施日】
Day1 2026年12月28日（月） 13:00 - 18:00
Day2 2026年12月29日（火） 13:00 - 18:00
Day3 2027年2月8日（月） 13:00 - 18:00
Day4 2027年2月9日（火） 13:00 - 18:00
Day5 2027年2月11日（木） 13:00 - 18:00
◎Day6 2027年2月15日（月） 13:00 - 18:00
上記スケジュールで原則として開講します。◎は発表会で、必ず出席してください。定期試験や個別の事情で参加できない場合は、必ず事前に連絡すること。相談のうえ、予備日への振替が可能な場合があります。
━━━━━━━━━━━
＝＝＝En＝＝＝
Contact Information
📧 *****
━━━━━━━━━━━
Course Overview
┄┄┄┄┄┄┄┄┄┄┄
1. Hands-on gateway to life sciences
2. Foundational DNA techniques: purification, PCR, sequencing
3. Theory-practice integration emphasis
4. Develops researcher mindset, not just technical operator skills
5. Analytical thinking through productive failure experiences
━━━━━━━━━━━
Course Description
┄┄┄┄┄┄┄┄┄┄┄
This six-day intensive program provides comprehensive experimental experience equivalent to introductory molecular biology coursework. The course features small class sizes designed to bridge humanities and sciences, with highly individualised instruction to optimise each student's learning experience.
The practical training consists of two main components:
Part A (First Half): Students learn fundamental techniques and concepts through experiments identifying fish species within the tuna genus using shared research materials.
Part B (Second Half): Students undertake independent projects building upon skills acquired in Part A.
Final Day: Students present their findings in a laboratory meeting format.
Guidance
English-speaking participants will receive individualised scheduling and program customisation. Please contact the email address below for inquiries.
Resources
▶️ YouTube: https://youtu.be/*****
Course Schedule
Six sessions, 13:00–18:00 each: Dec 28–29, 2026 and Feb 8, 9, 11, 15, 2027. Attend all six to receive credit. Final-day lab-meeting presentation: Mon, Feb 15, 2027. 💡 #DIYbiology
＊対面授業に参加可能な学生のみに履修を制限
＊実験三昧・研究室体験
＊少人数制・自分のペースで
＊生命科学分子生物学実験入門編
＊体験を通じた"考えるトレーニング"
【到達目標】
1. DNA抽出・PCR・電気泳動・シーケンス解析といった分子生物学の基礎技術を、手を動かして一通り実施できる
2. 実験ノートに観察と手順を正確に記録し、自分の結果を根拠に考察・説明できる
3. 答えの定まっていない課題に対して、自分で実験をデザインし、試行錯誤しながら取り組める
4. うまくいかない結果（失敗）から原因を考え、次の一手を組み立てられる
━━━━━━━━━━━
分子生物学の入門編にあたる実験体験を、実質6日間の集中講義で行います。文理を問わない少人数制で、個別最適なプログラムを目指します。実習は2つのパートに分かれます。前半Aパートは、共通課題「マグロ属の魚種判別実験」で基礎スキルと考え方を習得します。後半Bパートは、その内容を活かして自由課題に取り組みます。最終日はラボミーティング形式で発表します。
━━━━━━━━━━━
Aパート｜基礎的な実験スキルと考え方の習得
┄┄┄┄┄┄┄┄┄┄┄
マグロの切り身は、味や形状から種別を見分けるのが難しい。魚の専門家でなければ、なおさらです。では、どうすれば誰でも正確に再現性をもって判別できるのか。本実習では、分子生物学的手法でマグロ属の種別判別を体験します。ねらいは2つ。1つは基礎的な実験スキルと考察方法の習得。もう1つは、ニュースでよく耳にするDNAやPCRといった生命科学の用語・技術の理解です。
【実習の流れ】
① 本実習内容の説明
② マグロからDNA抽出
③ 遺伝子増幅法（PCR法）によるDNAの増幅とDNA配列特異的切断酵素による切断
④ DNA断片を電気泳動により分離して検出
⑤ 得られたDNAのパターンからマグロの種別判別
⑥ サンガーシーケンス解析によるマグロの種別判別
⑦ 結果に関する発表およびディスカッション
━━━━━━━━━━━
Bパート｜自由課題を通じた"考えるトレーニング"
┄┄┄┄┄┄┄┄┄┄┄
上記の作業に加え、各自の進度に応じたシンプルな課題を個人／グループに随時与えます。Web検索・過去のプリント・生成AIを使っても、答えは簡単には見つかりません。実験を自らデザインして検討する必要もあります。この"考えるトレーニング"で、答えの定まらない課題に挑戦する体験を、楽しみながら味わってください。
━━━━━━━━━━━
【ガイダンス】
対面でのガイダンスは行いません。下記の録画ガイダンスを必ず視聴し、履修を検討してください。履修希望者はフォームを送信すること（定員に達し次第、募集締切）。フォームURLはガイダンスの欄を参照。個別対応が必要な場合は、メールでご連絡ください。
【実習実施日】
Day1 2026年12月28日（月） 13:00 - 18:00
Day2 2026年12月29日（火） 13:00 - 18:00
Day3 2027年2月8日（月） 13:00 - 18:00
Day4 2027年2月9日（火） 13:00 - 18:00
Day5 2027年2月11日（木） 13:00 - 18:00
◎Day6 2027年2月15日（月） 13:00 - 18:00
上記スケジュールで原則として開講します。◎は発表会で、必ず出席してください。定期試験や個別の事情で参加できない場合は、必ず事前に連絡すること。相談のうえ、予備日への振替が可能な場合があります。
━━━━━━━━━━━
＝＝＝En＝＝＝
Contact Information
📧 *****
━━━━━━━━━━━
Course Overview
┄┄┄┄┄┄┄┄┄┄┄
1. Hands-on gateway to life sciences
2. Foundational DNA techniques: purification, PCR, sequencing
3. Theory-practice integration emphasis
4. Develops researcher mindset, not just technical operator skills
5. Analytical thinking through productive failure experiences
━━━━━━━━━━━
Course Description
┄┄┄┄┄┄┄┄┄┄┄
This six-day intensive program provides comprehensive experimental experience equivalent to introductory molecular biology coursework. The course features small class sizes designed to bridge humanities and sciences, with highly individualised instruction to optimise each student's learning experience.
The practical training consists of two main components:
Part A (First Half): Students learn fundamental techniques and concepts through experiments identifying fish species within the tuna genus using shared research materials.
Part B (Second Half): Students undertake independent projects building upon skills acquired in Part A.
Final Day: Students present their findings in a laboratory meeting format.
Guidance
English-speaking participants will receive individualised scheduling and program customisation. Please contact the email address below for inquiries.
Resources
▶️ YouTube: https://youtu.be/*****
Course Schedule
Six sessions, 13:00–18:00 each: Dec 28–29, 2026 and Feb 8, 9, 11, 15, 2027. Attend all six to receive credit. Final-day lab-meeting presentation: Mon, Feb 15, 2027. 💡 #DIYbiology
時間割／共通科目コード
コース名
教員
学期
時限
60218
CAS-TC1300Z1
全学体験ゼミナール (🧬🐟🌳🐝 身近な生命科学実習 ／ Molecular Biology in our daily lives)
鹿島 勲
集中
マイリストに追加
マイリストから削除
講義使用言語
日本語、英語
単位
1
実務経験のある教員による授業科目
NO
他学部履修
不可
開講所属
教養学部（前期課程）
授業計画
━━━━━━━━━━━
Aパート｜基礎的な実験スキルと考え方の習得
┄┄┄┄┄┄┄┄┄┄┄
① 本実習内容の説明
② マグロからDNA抽出
③ 遺伝子増幅法（PCR法）によるDNAの増幅とDNA配列特異的切断酵素による切断
④ DNA断片を電気泳動により分離して検出
⑤ 得られたDNAのパターンからマグロの種別判別
⑥ サンガーシーケンス解析によるマグロの種別判別
⑦ 結果に関する発表および、ディスカッション
━━━━━━━━━━━
Bパート｜自由課題を通じた"考えるトレーニング"
┄┄┄┄┄┄┄┄┄┄┄
上記の既定の作業に加え、参加している学生各自の学習到達度・実験の進行度合いに個別に対応し、初心者でも理解可能なシンプルな課題を個人／グループに随時与える。Web検索、過去のプリント集、生成AIを利用しても、答えは簡単には見つからない。各自／グループは、実験を自らデザインして各種の検討を行う必要もある。規定の実習の作業内容に追加するこの"考えるトレーニング"、答えが確定していない課題に挑戦する体験、楽しみながら実習に取り組んで欲しい。
＝＝＝En＝＝＝
━━━━━━━━━━━
Part A | Acquiring Basic Experimental Skills and Scientific Thinking
┄┄┄┄┄┄┄┄┄┄┄
Classifying tuna varieties (sushi, fillet, block) by taste and appearance is challenging without expert knowledge. How can we accurately and reproducibly identify different tuna species?
Students receive tuna specimens (fillets or sushi) and analyse them using molecular biology techniques to determine species identity. The course culminates in mini-presentations of results, designed to: (1) master fundamental experimental skills and scientific discussion methods, and (2) understand life science concepts like DNA and PCR commonly referenced in daily news.
Experimental Workflow:
① Course overview and methodology explanation
② DNA extraction from tuna specimens
③ DNA amplification via PCR
④ Electrophoresis and fragment detection
⑤ Sanger sequencing of PCR products
⑥ Species identification through database comparison
⑦ Lab meeting-style presentation and discussion
Students perform DNA extraction, PCR amplification, Sanger sequencing, and sequence analysis. Final DNA sequences are compared against known tuna databases to identify the specific tuna genus species provided.
━━━━━━━━━━━
Part B | Independent "Thinking Training" Projects
┄┄┄┄┄┄┄┄┄┄┄
Beyond the structured workflow, students receive individualised assignments tailored to their learning progress and experimental advancement. These challenges cannot be easily resolved through web searches, generative AI, or reference materials—requiring students to design and conduct original experiments (e.g., testing DNA extraction methods and performing PCR from other biological or food samples).
This "thinking training" component adds open-ended challenges to the prescribed practical flow, providing experience with problems lacking predetermined solutions.
We hope that you will enjoy your stay on this course.
授業の方法
下記に挙げる授業方法・形態で実施する予定である。作業内容や課題は、随時変更する可能性がある。実験作業は、担当教員が学生に対して個別に対応してサポートする。
・講義：実習背景・目的・方法の説明を教員が行う。（全体｜対面）
・実験ノートの記入：各自実験ノートを記入する。実習期間中は、毎日作業終了後に担当教員がノートを確認し、試問を行う。（個人｜対面）
・実験作業：各自個別のサンプルを扱う。（個人｜対面）
・課題回答（問題集）：各自の進度に応じた問題集（Problem Book）に取り組む。他の学生とグループを作って回答してもよい。また、実習室にあるMac/PC/Googleflex、各自のノートパソコンやモバイル端末を用いてオンライン図書館等を積極的に利用して構わない。（個人もしくは、グループ｜対面およびオンライン指導）
・実験結果考察：各自個別のサンプルの実験結果について考える。他の学生とグループを作って回答してもよい。また、実習室にあるMac/PC/Googleflex、各自のノートパソコン、モバイル端末にてオンライン図書館等を積極的に利用して構わない。（個人もしくは、グループ｜対面およびオンライン指導）
・自由課題実験計画・遂行：各自個別に自由課題について、教員とGoogle Docsを用いて相談しながら進める。（個人｜対面およびオンライン指導）
・ミニプレゼンテーション：各自個別のサンプルの実験結果・考察について発表する。フォーマルなプレゼン用資料の作成は必要ない。生データを張り付けた実験ノートを用いてラボミーティング形式でプレゼンを行う。オンライン参加者はZoom上から、実験ノート、発表者および会場の映像・音声の情報を共有し、発表会に参加することができる。（全体）
＝＝＝En＝＝＝
Class Methods and Structure
The course employs the following complementary approaches, with laboratory staff providing individual support as needed.
A. Lectures [All Students]
Instructor-led explanations of key concepts and methodologies.
B. Laboratory Notebook Maintenance [Individual]
Students maintain detailed experimental records in designated paper notebooks or as PDFs. Instructors review notebooks and provide feedback after each session.
C. Experimental Work [Individual]
Hands-on sample handling and data collection.
D. Problem Book Assignments [Individual or Group]
Progress-based assignments designed to deepen practical understanding and provide "thinking training." Students may work individually or collaboratively using laboratory computers, personal devices, or resources at the Komaba campus library.
E. Data Analysis and Discussion [Individual or Group]
Students analyse experimental results independently or collaboratively, utilising available computational resources on campus or personal devices.
F. Lab Meeting-Style Presentations [Individual or Group]
Students present experimental results and analyses without formal slide preparation. Raw laboratory notes are projected directly using overhead projectors, with hybrid participation (in-person + online) available.
Two Presentation Approaches:
(1) Raw Data Sharing
Students photograph and share unedited laboratory notes via camera or smartphone. This approach emphasises authentic data sharing, increases error detection through peer review, and provides valuable collaborative feedback.
(2) Formal Slide Presentations
Students create polished presentations (PowerPoint, Google Slides, Keynote, PDF) highlighting key findings while omitting extraneous data. This format may be more accessible to unfamiliar audiences, but it risks masking analytical errors through selective data presentation.
💡 Both approaches develop essential academic skills: authentic scientific communication and formal presentation techniques—a balance between these methods enhances overall academic performance.
成績評価方法
㋑講義出席（10点）、㋺実験セッション出席（20点／到達目標1）、㋩実験ノートの提出（50点／到達目標2・4）、㊁課題の提出・提案（10点／到達目標3）、㊄最終発表（10点／到達目標2）により評価する。※安全管理上、レクチャーを受講しない学生は実験に参加することはできない。詳細は、ガイダンス時に確認すること。80点以上で合格。
＝＝＝En＝＝＝
Grading System
Course evaluation is based on the following criteria. Students must achieve 80% or higher to pass and receive credit. For safety reasons, students who miss the introductory lecture cannot participate in experimental work.
Grade Distribution:
Lecture Attendance: 10% (Objective 1)
Experimental Session Attendance: 20% (Objective 1)
Laboratory Notebook Submission: 50% (Objectives 2 & 4)
Assignment Completion and Proposals: 10% (Objective 3)
Final Presentation: 10% (Objective 2)
Total: 100% Passing Grade: 80% minimum
履修上の注意
事前学習は特に必要としない。定期試験終了後に、気持ちを切り替えて実習に参加・集中して、研究・研究室体験を満喫して欲しい。わからないことや知らないことをどのように気づき・受け止めて解決するのか、そのプロセスも参加者で一緒に楽しみながら共有する"考えるトレーニング"。
少人数制による個別最適なスケジュール・プログラムの実施を本授業の特色の一つとしている。定員は10名まで。定員に達し次第、募集締切。
＝＝＝En＝＝＝
※Safety protocols and laboratory guidelines will be covered during the first day orientation.
No prior preparation is required. After final examinations end, students should transition their mindset and fully immerse themselves in this intensive research experience. This "thinking training" involves collectively enjoying and sharing the process of recognising, accepting, and solving unknown challenges alongside fellow participants.
Small class sizes with individually optimised schedules and programs are a key feature of this course. Maximum enrollment: 10 students. Enrollment closes when capacity is filled.
